❶ 請問如何用sevage法（即用氯仿-正丁醇5：1）除掉多糖中的蛋白
我查的資料都是4:1的，具體方法:在多糖溶液中加入體積4:1的氯仿-正丁醇混合溶液進行充分振搖，將游離蛋白質變性成為不溶性物質而沉澱，經離心或分液去除蛋白質，此方法條件溫和，但需要反復多次才能除去盡可能多的蛋白質
❷ servage去除蛋白質原理 為什麼正丁醇和氯仿的比率為1：4或1；5,還有這個實驗的原理.
savage法提取多糖：
根據蛋白質在氯仿等有機溶劑變性而不溶與水的特點,將多糖水溶液、氯仿、戊醇（或正丁醇）之比調為25:5:1或25:4:1,混合物劇烈振搖20到30分鍾,蛋白質與氯仿－戊醇（或正丁醇）生成凝膠物而分離,然後離心,分去水層和溶劑層交界處的變性蛋白質.
此種方法較溫和,在避免降解上有較好效果,但效率不高,如五味子多糖的提取實驗中要重復處理達三十幾次.並且每次除去蛋白質變性膠狀物時,不可避免的溶有少量多糖,另外少量多糖與蛋白質結合的蛋白聚糖和糖蛋白,在處理時會沉澱下來,造成多糖的損失.如能配合加入一些蛋白質水解酶,再用Sevage法效果更佳.
❸ Sevag試劑怎麼除蛋白
常用的去除多糖中蛋白質的方法有：Sevag法、三氟三氯乙烷法、三氯醋酸法，這些方法的原理是使多糖不沉澱而使蛋白質沉澱，其中Sevag方法脫蛋白效果較好，它是用氯仿：戊醇或丁醇，以4：1比例混合，加到樣品中振搖，使樣品中的蛋白質變性成不溶狀態，用離心法除去。
❹ sevage法脫蛋白的具體步驟
正丁醇、氯仿混合溶液（正丁醇：氯仿=1：4或1：5）和樣物提取液混合並且振盪，不需要加熱
利用離心機離心，直到離液面交界處無白色混懸，也就是蛋白質介於提取液與試劑交界處即可~
最後分別提取即可
❺ sevag法脫蛋白，具體的什麼方法
常用的去除多糖中蛋白質的方法有：Sevag法、三氟三氯乙烷法、三氯醋酸法，這些方法的原理是使多糖不沉澱而使蛋白質沉澱，其中Sevag方法脫蛋白效果較好，它是用氯仿：戊醇或丁醇，以4：1比例混合，加到樣品中振搖，使樣品中的蛋白質變性成不溶狀態，用離心法除去。
Sevage 法：利用蛋白質在三氯乙烷等有機溶劑中變性的特點，將提取液與 Sevage試劑[氯仿：正丁醇=5：1（V/V）]5：1 混合，振盪，離心，變性後的蛋白質介於提取液與 Sevage 試劑交界處。此法的優點是條件溫和，不會引起多糖的變性。
三氯醋酸法 於樣品液中加入適量的三氯醋酸，混勻後靜置過夜，離心過濾棄去濾渣，收集濾液，測定糖濃度和蛋白質濃度"
❻ 提純多糖時用Sevage法除蛋白的具體方法急！！！
.....................自己以後要多看資料，這是自己判斷的事情。
這個比例其實都行，沒有絕對的對錯。你就選擇1：4 震盪時間自己決定，應為如果你要拖干凈的話，也可以多次每次時間短啊，這個和時間長次數少效果是一樣的。 離心好！並且告訴你樣品稍微多准備點，如果你的樣品蛋白質含量高，你去蛋白次數過多的話，你的樣品會在反復的轉移中損失很大。
順便帶上手套，口罩，這個東西是蛋白質變性，弄到你手上最多吊點皮（如果你不在乎） 氣味很刺激。化學實驗都是和毒品打交道，盡量注意安全衛生。
❼ sevage法除蛋白需要的試劑儀器和步驟
Sevage 法：利用蛋白質在三氯乙烷等有機溶劑中變性的特點，將提取液與 Sevage試劑[氯仿：正丁醇=5：1（V/V）]5：1 混合，振盪，離心，變性後的蛋白質介於提取液與 Sevage 試劑交界處。此法的優點是條件溫和，不會引起多糖的變性。
儀器主要就是離心管、離心機之類的了，試劑就氯仿、正丁醇。
❽ sevag法具體是什麼樣的啊
加入0.2倍多糖溶液體積的氯仿和0.04倍體積的正丁醇混合振盪半小時進行分離，直至氯仿與水的界面無沉澱為止，且要重復處理2-3次才能有效除去多糖中的蛋白質。
一般都有市售的試劑盒，也不貴，效果比自己配試劑強很多